Die Holz- und Pilzkäferfauna im NSG „Seußlitzer Grund“ nordwestlich von Meißen

1. Vorbemerkungen

Das NSG „Seußlitzer Grund“ umfasst 148,43 ha und liegt östlich der Ortschaft Diesbar-Seußlitz (SMUL 2008). Nachdem das Schutzgebiet 1961 ausgewiesen wurde, erfolgten Anfang der 1990er Jahre im Rahmen der Neuausweisung und der Erarbeitung eines Pflege- und Entwicklungskonzepts sporadische Erfassungen zu Pflanzen- und Tierwelt, u.a. auch zur Holz- und Pilzkäferfauna (LORENZ 1994). Entsprechend einer vorgegebenen Methodik fanden damals wenige Sammelexkursionen statt, wobei in erster Linie stichprobenartige Handfänge durchgeführt wurden, die über das ganze NSG verteilt waren. Das Erfassungsergebnis betrug damals 118 xylobionte Käferarten was im Vergleich zu ähnlichen Untersuchungen in anderen Schutzgebieten als überdurchschnittlich gut bewertet werden konnte. Damals wurden einige faunistisch bemerkenswerte und naturschutzfachlich bedeutsame Arten nachgewiesen, vorwiegend im zentralen Teil des NSG. Es stellte sich die Frage, ob nach über 20 Jahren der Schutzzweck noch gegeben und ein ähnliches Artenspektrum noch vorhanden ist.

Einjährige, meist sporadische Erfassungen sind bei vielen ökofaunistischen Untersuchungen leider die Regel geworden, wenngleich bekannt ist, dass die Ergebnisse meist nicht repräsentativ sind, zumindest nicht für die meisten Insektengruppen sowie bei solch heterogenen, großen Untersuchungsgebieten. Auf Grund ihrer versteckten, hochspezifischen, meist dämmerungs- und nachtaktiven Lebensweise, einer niedrigen Individuenzahl und geringer Vagilität, was den Nachweis besonders schwierig macht, sowie der meist ausgesprochen lokaler, punktuellen Verbreitung können viele xylobionte Käferarten oft erst nach mehrjährigen Erfassungen nachgewiesen werden. Meist sind es aber gerade diese stenöken Spezialisten, die die Beurteilung des naturschutzfachlichen Wertes eines Schutzgebiets implementieren. Als so genannte „hotspots“ für Holz- und Pilzkäfer gelten alte, anbrüchige Höhlenbäume in der Absterbephase. Diese Sonderstrukturen müssen zum richtigen Zeitpunkt gefunden und mit den entsprechenden Methoden untersucht werden, um mit gewisser Wahrscheinlichkeit die tatsächlich wertgebenden Arten, z.B. Urwald-Reliktarten (MÜLLER et al., 2005), nachweisen zu können.

Das Artenspektrum der xylobionten Käfer i.w.S. umfasst in Sachsen ca. 20% der aktuell nachgewiesenen Arten, d.h. etwa 900 Spezies aus fast allen der 100 Käferfamilien. Neben den „echten“ Holzbesiedlern gibt es auch Arten, die sich an Holzpilzen, unter der Rinde oder in Baumhöhlen bzw. im Mulm entwickeln, sodass diese heterogene Gruppe folgendermaßen definiert werden kann:

Zur Gruppe der Holz- und Pilzkäfer zählen alle Arten, deren Entwicklung in lebenden, absterbenden und toten Bäumen erfolgt bzw. die als Larven und (oder) Imagines an oder in Holz, Baumhöhlen bzw. Mulm, Baumpilzen, ausfließendem Baumsaft, Nestern baumhöhlenbrütender Vogelarten sowie in oder unter der Rinde der Bäume leben und direkt oder indirekt an diese Strukturen gebunden sind, einschließlich räuberischer Käferarten, regelmäßig im Holz bzw. unter der Rinde überwinternder Arten sowie Arten, die als „Gäste“ bei holz- und rindennistenden Hymenopteren (z.B. Ameisen, Hornissen, Wespen und Hummeln) leben.

Diese umfangreiche ökologische Gruppe besitzt vielfältige Beziehungen im Nahrungskettengefüge und Stoffkreislauf der Natur. Beispielsweise kommt es durch die Fraßtätigkeit der „echten“ (xylobionten) Holzkäfer zur Oberflächenvergrößerung (Bohrlöcher, Nagespäne) des Holzes, was die Zersetzungsprozesse durch Pilze und Mikroorganismen beschleunigt und somit die Humifizierung und Bodenbildung fördert. Außerdem können die im Holz oder unter der Rinde lebenden Larven einen erheblichen Anteil der Nahrung von Specht, Kleiber, Baumläufer ausmachen und die Imagines gehören zum Beutespektrum von weiteren waldbewohnenden Vogelarten sowie Kleinsäugern (Spitzmäuse, Fledermäuse, Igel usw.). Von großer Bedeutung ist weiterhin die Bereitstellung von Lebensräumen in Form von Bohrlöchern, in denen sich holznistende Grabwespen- und Wildbienenarten ansiedeln, die wiederum von meist artspezifischen Schlupfwespenarten parasitiert werden. Eine relativ große Zahl von Arten dieser Käfergruppe ist dabei außerordentlich stenök, d.h. sie besitzen einen hohen Spezialisierungsgrad, eine geringe ökologische Amplitude, meist ein geringes Ausbreitungsvermögen, durchlaufen einen mehrjährigen Entwicklungszyklus und treten in relativ kleinen Populationen auf. Viele Arten sind an bestimmte Baumarten und besonders stark dimensionierte Exemplare gebunden und stellen bestimmte Ansprüche an Zersetzungsgrad, Feuchtigkeit, Temperatur, Exposition und Pilzbesatz des Holzes. Weiterhin gibt es viele Arten, die mit anderen vergesellschaftet sind (wird eine Art ausgerottet, sterben eine Reihe weiterer Art ebenfalls aus). Außerdem benötigen viele Arten einen Biotopkomplex (sogenannte Tierarten mit integrierenden Raumanspruch, vgl. auch RÜCKRIEM & ROSCHER 1999). Neben dem toten oder absterbenden Baum als Entwicklungshabitat sind blütenreiche Strukturen auf naturnahen Waldwiesen, an Waldrändern und entlang von Wegen und Straßen zur Geschlechterfindung und damit zur Fortpflanzung besonders wichtig, vor allem für Pracht-, Blatthorn- und Bockkäferarten. Insofern kommt alt- und totholzbewohnenden Käfer i.w.S. eine besondere Bedeutung als Qualitätsparameter für Wälder zu (RÜCKRIEM & ROSCHER 1999).

Aufgrund der intensiven forstlichen Bewirtschaftung sind in den letzten Jahrzehnten Alt- und Totholzstrukturen, vor allem stehende, hohle und morsche Bäume größerer Dimensionen, fast flächendeckend beseitigt worden. In den Forsten erreichen die Bäume nur noch ein hiebsreifes Alter von 90-250 Jahren. Damit wird das natürliche, altersbedingte Absterbestadium, in dem es zu einer großen Artenakkumulation kommt, verhindert. Die Folge war und ist, besonders in den Wirtschaftswäldern, ein rapider Rückgang einer Vielzahl von Tier- und Pilzarten, denen alte Höhlenbäume und stärkeres Totholz die einzige Entwicklungsmöglichkeit bietet. In der Käferfauna am stärksten betroffen sind viele Arten aus folgenden Familien: Hirschkäfer (Lucanidae), Bockkäfer (Cerambycidae), Prachtkäfer (Buprestidae), Blatthornkäfer (Scarabaeidae), Schwarzkäfer (Tenebrionidae), Schnellkäfer (Elateridae), Düsterkäfer (Melandryidae) u.a. Die Beseitigung von Alt- und Totholz führte auch zu einem starken Rückgang des Baumpilzbesatzes in den Wäldern, was eine extreme Gefährdung der an diese Pilze gebundenen Käferfauna zu Folge hatte. Viele Vertreter der Familie Pilzkäfer (Erotylidae), Schwammkäfer (Cisidae), Baumschwammkäfer (Mycetophagidae) u.a. sind ebenfalls zunehmend gefährdet.

Die historischen, anthropogenen Einflüsse auf den Wald sind von entscheidender Bedeutung für viele Arten. Je ursprünglicher und in der Vergangenheit unberührter der Wald war, desto wahrscheinlicher ist das Vorhandensein von stenöken Arten, die aus bioindikatorischer Sicht am aussagekräftigsten sind. Eine wesentliche Voraussetzung für das Vorkommen vieler dieser seltenen Holzkäferarten - sogenannte „Reliktarten“ - ist deshalb die Urständigkeit bzw. Biotoptradition, das heißt, dass in den letzten Jahrhunderten durchgängig der gleiche Wald oder zumindest die gleichen einheimischen Baumarten kontinuierlich bis zur Zerfallsphase gestockt haben müssen. Während viele Kennarten der Bodenflora, nach der die jeweilige natürliche Waldgesellschaft charakterisiert wird, oft noch in künstlich aufgeforsteten Beständen vorkommen, da die Samen viele Jahre im Boden überdauern können, führte das Abholzen des ursprünglichen Baumbestandes zum lokalen Aussterben stenöker Käferarten. Eine Ausbreitung der meist ziemlich standortsgebundenen Tiere ist kaum möglich, da ein relativ dichtes Netz von Totholzstrukturen, wie es im „Urwald“ vorhanden ist, in unseren Wirtschaftswäldern fehlt. In Schutzgebieten fristen sie meist ein isoliertes Dasein.

Das Vorkommen einer relativ großen Zahl bestimmter, sowohl an Alt- und Totholz als auch an Baumpilze gebundener Käferarten charakterisiert die Naturnähe eines Waldes besser bzw. dessen naturschützerischen Wert somit wesentlich aussagefähiger als beispielsweise das Vorkommen bestimmter Spechtarten, der in kurzer Zeit größere Entfernungen fliegend zurücklegen können.

2. Methodik

Wie Anfang der 1990er Jahre fanden wiederum mehrere Sammelexkursionen statt bei denen v.a. Kescher- und Klopfschirm sowie Käfersieb zum Einsatz kamen sowie zwei Lichtfänge. Weil sich dies seit geraumer Zeit als effektive Erfassungsmethode bewährt hat, kamen zusätzlich sogenannte Lufteklektoren (Baumkronen-Fensterkreuzfallen) zum Einsatz. Im Jahr 2015 wurden 4 Lufteklektoren im Blatterslebener Grund aufgehängt, einem nordöstlichen Seitentälchen des oberen Seußlitzgrundes, und in den Jahren 2016 sowie 2017 sind jeweils 5 Lufteklektoren im mittleren bzw. unteren, westlichen Teil des NSG von April bis Oktober aufgebaut worden, wobei sie monatlich geleert wurden (Abb. 1, 2, 3).

Abb. 1: NSG Seußlitzer Grund, Position der Lufteklektoren (2015: gelbe Kästchen; 2016: rote Kästchen; 2017: blaue Kästchen) und Flächen außerhalb des Waldes, auf denen vereinzelt Kescher- und Klopfschirmfänge stattfanden (rot schraffiert)

Abb. 2: Beispiel für die Fensterfalle (Lufteklektor) an Baum-Nr. 8: Der Lufteklektor wurde unmittelbar an der großer Stammhöhle der Rot-Buche befestigt, sodass viele Mulmhöhlenarten nachgewiesen werden konnten

Abb. 3: Liste mit Angaben zu den Lufteklektor-Bäumen

Die Untersuchungen erfolgten mit Unterstützung des Kollegen Olaf Jäger vom Senckenberg Museum für Tierkunde Dresden. Im Herbst 2016 sowie im Jahr 2017 wurde im oberen Seußlitzgrund von Dr. Andre Reimann vom Senckenberg Museum für Tierkunde Dresden eine neue Fangapparatur getestet, eine so genannte Baumkronen-Malaisefalle, die vor allem zur Erfassung bestimmter Dipteren zum Einsatz kam.

3. Ergebnisse xylobionte Käfer

Im Jahr 2015 konnten 385 Käferarten nachgewiesen werden, darunter 183 Holz- und Pilzkäferarten. Beim Lichtfang am 7.7.2015 wurden 108 Käferarten gefunden und in den Lufteklektoren zwischen 67 und 107 Arten je Falle. Im Jahr 2016 konnten mit 366 Käferarten eine ähnlich hohe Zahl nachgewiesen werden wie 2015, wobei sich die Gesamtartenzahl auf 576 erhöht, darunter, wie ein Jahr zuvor etwa 180 Holz- und Pilzkäferarten. Insgesamt erhöht sich die Artenzahl an xylobionten Käfern auf 260, da 80 neue Arten hinzugekommen sind, d.h. sie konnten im Jahr 2015 nicht gefunden werden. Bei den Kescher- und Klopfschirmfängen und sonstigen gelegentlichen Beifängen kamen 2016 knapp 180 Käferarten zusammen. Im Jahr 2017 sind 454 Käferarten nachgewiesen worden, darunter 196 Arten, die in den beiden vorhergehenden Jahren noch nicht gefunden wurden. Beim Lichtfang am 31.7.2017 wurden 77 Käferarten angelockt. Damit erhöht sich die Gesamtzahl nach 3 Jahren Erfassung auf 774 Käferarten, darunter 292 xylobionte Käferarten i.w.S.

Die 292 Holz- und Pilzkäferarten sind in angehängter Tabelle mit Angaben zu Häufigkeit, Gefährdung, Schutzstatus und Ökologie aufgelistet. Laut der bundesdeutschen Roten Liste (GEISER 1998) konnten 10 Arten gefunden werden, die als „vom Aussterben bedroht“ gelten und 43 Arten mit dem Gefährdungsgrad: „stark gefährdet“ sowie 55 Arten, die als „gefährdet“ eingestuft sind. Insgesamt gelang somit der Nachweis von 108 Rote-Liste-Arten entsprechend der bundesdeutschen Roten Liste (GEISER 1998). Nach der Bundesartenschutzverordnung sind 36 Arten besonders geschützt. Etwa 100 Arten und damit ein Drittel des Artenspektrums kann als selten bzw. sehr selten eingestuft werden (siehe Tabelle Spalte „BV“). Außerdem sind nach SCHMIDL & BUSSLER (2004) 31 Arten als sogenannte „Indikatorarten“ eingestuft, d.h. sie besitzen eine große ökologische und bioindikatorische Relevanz und unterstreichen den hohen naturschutzfachlichen Wert des Waldgebiets (Tabelle Spalte „IA“). Bemerkenswert ist der Nachweis von fünf sogenannten „Urwald-Reliktarten“ (nach MÜLLER et al. 2005, ECKELT 2017, LORENZ 2010) (Tabelle Spalte „UR“).

Entsprechend der Ökologie besitzen Altholz- und Frischholzbesiedler mit 107 bzw. 97 Arten etwa gleich große Anteile, gefolgt von Holzpilzbesiedlern mit 54 Arten und Arten mit xylobionten Sonderbiologieen mit 21 Arten sowie 14 Mulmhöhlenbesiedlern (Tabelle Spalte „ÖG“).

Einige faunistische Besonderheiten bzw. naturschutzfach besonders relevante Arten, die gesetzlich geschützt und/oder einen hohen Gefährdungsgrad besitzen, sind beispielsweise:

Osmoderma eremita

Da der Eremit oder Juchtenkäfer als prioritäre Art der FFH-Richtlinie den höchsten Schutzstatus in Europa genießt, sind sowohl die Käfer und Larven als auch seine Brutbäume grundsätzlich geschützt. Es gibt also ausdrücklich ein Tötungsverbot für die Tiere und zusätzlich ein Zerstörungsverbot seiner Entwicklungsstätten. Die Art ist an alte, mit Mulmhöhlen ausgestattete Laubbäume gebunden und wurde sowohl am Ostrand des UG, d.h. im oberen Blatterslebener Grund bzw. in einer hohlen Kirsche in einem Streuobstwiesenrest als auch im unteren Seußlitzgrund bzw. in einer hohlen Rosskastanie nachgewiesen.

Abb. 4: Juchtenkäfer (Osmoderma eremita) (Körperlänge: ca. 3,5 cm)

Die für die Besiedlung des Juchtenkäfers geeignete Baumhöhle muss ein spezifisches, relativ konstantes Innenklima aufweisen, nicht allzu viel Feuchtigkeit aufnehmen, und das Holz ist von bestimmten phytopathogenen bzw. saprophytischen Pilzen bereits teilweise aufgeschlossen, sodass sich erdfeuchter Mulm gebildet hat. Auf Grund ihres geringen Ausbreitungsvermögens zeugen Vorkommen des Juchtenkäfers von einer großen Faunentradition, d.h. auf gleichem Standort haben sich in den letzten Jahrhunderten ähnliche Habitatstrukturen befunden: alte, anbrüchige Laubbäume mit Baumhöhlen. Der Juchtenkäfer gilt sowohl nach der sächsischen als auch nach der bundesdeutschen Roten Liste als „stark gefährdet“. Entsprechend des europäischen Schutzgebietssystems NATURA 2000 bzw. der FFH-Richtlinie der EU handelt es sich bei Osmoderma eremita um eine „prioritäre Art“ des Anhanges II (Tier- und Pflanzenarten von gemeinschaftlichem Interesse, für deren Erhaltung besondere Schutzgebiete ausgewiesen werden müssen) und um eine Art des Anhanges IV (Streng zu schützende Tier- und Pflanzenarten von gemeinschaftlichem Interesse).

Die Vorkommen des Juchtenkäfers (Osmoderma eremita) konzentrieren sich vor allem in wärmebegünstigten Lagen der großen Flusstäler und des Hügellandes sowie der Ebene. Der Hauptverbreitungsschwerpunkt befindet sich im Bereich des Elbtales zwischen Pirna, Dresden, Meißen und Riesa sowie Döbeln und Leisnig. Nach bisherigem Kenntnisstand gehört das UG zum nördlichen Rand des derzeit bekannten Areals in Sachsen. In den umliegenden Streuobstwiesen gibt es weitere Brutbäume, aber nur wenige Kilometer nördlich und östlich in der intensiv agrarindustriell genutzten Großenhainer Pflege sind keine Fundorte mehr bekannt.

Der Hirschkäfer (Lucanus cervus) ist eine weitere FFH-Käferart, die im Gebiet vorkommt, jedoch im Rahmen dieser Untersuchung nicht gefunden wurde. Es gibt aber Nachweise aus den Jahren 2007 und 2012, die im Rahmen des FFH-Artmonitorings dokumentiert werden konnten.

Protaetia fieberi

Diese sehr seltene Goldkäferart entwickelt sich in Baumhöhlen mit Mulm. Die Larven stellen ähnlich hohe spezifische Anforderungen an das Mulmsubstrat, wie der Eremit. Im Gegensatz zum Marmorierten Goldkäfer hat diese Art ein sehr begrenztes Verbreitungsareal in Sachsen, denn nur in der Umgebung um Meißen sind Funde bekannt, beispielsweise im Saubachtal bei Gauernitz.

Abb. 5: Fieber‘s Goldkäfer (Protaetia fieberi) (2,5 cm)

Protaetia marmorata

Der Marmorierte Goldkäfer entwickelt sich manchmal zusammen mit dem Eremiten in der gleichen Baumhöhle. Die Larven stellen ähnliche, aber nicht ganz so spezifische Anforderungen an das Mulmsubstrat. Insofern kann die Art als „Vorbesiedler“ bzw. „Mulmhöhlenbereiter“ für den Eremiten dienen, weil sie kleinere Höhlen besiedelt, die sich dann über Jahre vergrößern, oder sie ist ein Nachbesiedler von ehemals vom Eremiten genutzten Mulmhöhlen.

Abb. 6: Marmorierter Goldkäfer (Protaetia marmorata) (2,5 cm)

Gnorimus nobilis

Der Grüne Edelscharrkäfer entwickelt sich in Baumhöhlen mit Mulm. Die Larven stellen ähnlich hohe spezifische Anforderungen an das Mulmsubstrat, wie der Eremit. Im Gegensatz zum Marmorierten Goldkäfer wird diese Art aber nur selten gefunden, scheint aber auch eher in submontanen Gegenden vorzukommen und enger an Wälder gebunden zu sein, während die drei vorher genannten Arten öfters auch in Obstbäumen in der offenen Landschaft anzutreffen sind.

Abb. 7: Grüner Edelscharrkäfer (Gnorimus nobilis) (ca. 1,5 cm)

Agrilus ater

Vom Pappel-Prachtkäfer gab es aus Sachsen nur einen etwa 100 Jahre zurückliegender Nachweis aus der Leipziger Region. Im Jahr 2010 wurde die Art wiedergefunden (KWAST 2010). Seit ein paar Jahren scheint die Art etwas häufiger zu werden, wahrscheinlich auch wegen des zunehmenden Absterbens der Hybrid-Pappeln, die letzmalig zu DDR-Zeiten in größerem Umfange, v.a. in der Feldflur gepflanzt wurden. Unter der abgelösten Rinde toter Pappeln kann man ziemlich regelmäßig die charakteristischen Fraßgänge finden. Die sehr flüchtigen Käfer werden kaum nachgewiesen, vorwiegend mit Lufteklektoren, wie hier im Seußlitzgrund.

Abb. 8: Pappel-Prachtkäfer (Agrilus ater) (Körperlänge: ca. 1 cm)

Sinodendron cylindricum

Der Kopfhornschröter gehört zu den kleineren Verwandten des Hirschkäfers und entwickelt sich beispielsweise im mäßig feuchten, morschen, bereits von Pilzen etwas aufgeschlossenen Holz am Stammfuß von alten, anbrüchigen Laubbäumen. Zudem konnte ein weiterer Hirschkäfer-Verwandter gefunden werden, der Rehschröter (Platycerus caraboides).

Abb. 9: Kopfhornschröter (Sinodendron cylindricum) (ca. 1,5 cm)

Pedostrangalia revestita

Der Rotgelbe Buchenschmalbock gehört zu den seltenen, heimischen Bockkäferarten. Bisher sind nur wenige Fundorte bekannt, beispielsweise nahe der Ortschaft Koblenz im Oberlausitzer Heide- und Teichgebiet oder bei Grimma. Die Entwicklung findet nicht nur an Buche, sondern auch an anderen Laubbaumarten statt. Nicht auszuschließen ist auch die Hybrid-Pappel als Fraßpflanze, denn die Art wurde im Lufteklektor nachgewiesen, der in dieser Baumart hing.

Abb. 10: Buchenschmalbock (Pedostrangalia revestita) (1,5 cm)

Obrium cantharinum

Der Dunkelbeinige Flachdeckenbock entwickelt sich in Pappelästen und lebt vorwiegend in den Baumkronen. Am Boden wird er kaum gefunden. Es gibt bisher erst wenigen Nachweise in Sachsen.

Abb. 11: Flachdeckenbock (Obrium cantharinum) (1 cm)

Axinopalpis gracilis

Der Messerbock kommt vor allem in den Baumkronen von Eichen vor. Er gilt als sehr selten, konnte aber in den vergangenen Jahren mehrfach gefunden werden, v.a. mit Hilfes des Lichtfanges. Offenbar ist die Art an warmen Hochsommernächten besonders flugaktiv und wird vom Licht angelockt.

Abb. 12: Messerbock (Axinopalpis gracilis) (ca. 1 cm)

Xylotrechus rusticus

Der Graue Espenbock galt in Sachsen früher noch als ziemlich selten, scheint aber in den vergangenen Jahren etwas häufiger zu werden. Wahrscheinlich profitiert die Art ähnlich wie der oben genannte Pappel-Prachtkäfer von den vielen derzeit absterbenden Hybridpappeln. Vielleicht auch Nicht auszuschließen ist auch die Hybrid-Pappel als Fraßpflanze, denn die Art wurde im Lufteklektor nachgewiesen, der in dieser Baumart hing.

Abb. 13: Grauer Espenbock (Xylotrechus rusticus) (ca.1,5 cm)

Plagionotus detritus

Der Hornissenbock galt in Sachsen früher auch als ziemlich selten, scheint aber in den vergangenen Jahren etwas häufiger zu werden. Die Art entwickelt sich v.a. an frisch totem Eichenholz.

Abb. 14: Hornissenbock (Plagionotus detritus) (ca.1,5 cm)

Exocentrus adspersus

Der Weißgefleckte Wimperhornbock entwickelt sich vor allem in recht dünnen, absterbenden oder frisch toten Eichenästen während der ähnlich aussehende Linden-Wimperhornbock (Exocentrus lusitanus) regelmäßig von recht dünnen, absterbenden oder frisch toten Lindenästen geklopft werden kann.

Abb. 15: Wimperhornbock (Exocentrus adspersus) (0,6 cm)

Ropalopus femoratus

Der Mattschwarze Scheibenbock ist auch in erster Linie ein Baumkronenbewohner, v.a. von alten Eichen. Am Boden findet man ihn nur selten. Die Art wurde an der großen, alten Eiche mit Hilfe des Lufteklektors Nr. 7 gefangen.

Abb. 16: Schwarzer Scheibenbock (Ropalopus femoratus) (1 cm)(Foto: Vaclav Hanzlik)

Xylotrechus antilope

Der Zierliche Widderbock kommt vor allem an Eichenästen vor. Die Art wurde in den letzten häufiger nachgewiesen.

Abb. 17: Zierlicher Widderbock (Xylotrechus antilope) (0,6 cm)

Cerambyx scopoli

Der Buchenbock oder Kleine Eichenbock entwickelt sich sowohl in Rot-Buchen und Eichen als auch v.a. in Obstbäumen, besonders Kirschen.

Abb. 18: Buchenbock (Cerambyx scopoli) (2 cm)

Saperda perforata

Der Gefleckte Pappelbock scheint ähnlich wie der Pappelprachtkäfer und andere an Pappeln gebundene Arten in den letzten Jahren etwas häufiger zu werden, weil er sich auch in den zunehmend absterbenden Hybridpappeln entwickelt.

Abb. 19: Gefleckter Pappelbock (Saperda perforata) (1,5 cm)

Neatus picipes

Dieser dem Mehlkäfer änliche Schwarzkäfer, entwickelt sich in Mulmhöhlen und im morschen Holz alter Laubbäume. In der Region um Meißen befindet sich ein Verbreitungsschwerpunkt dieser ziemlich seltenen Art, da sie hier meist zusammen mit dem Juchtenkäfer vorkommt, v.a. in den Streuobstwiesen bzw. alten, hohlen Obstbäumen.

Abb. 20: Schwarzkäfer (Neatus picipes) (1,5 cm)

Aeletes atomarius

Diese sehr kleine und sehr seltene Stutzkäferart lebt in großen Baumhöhlen von sehr alten Laubbäumen, v.a. Buchen. Auf Grund dieser engen Abhängigkeit an Biotoptradition und das Vorkommen in Wäldern mit altem Baumbestand gilt er als sogenannte Urwald-Reliktart. Bisher sind nur wenige Nachweise aus der Oberlausitz bekannt (KLAUSNITZER et al. 2009).

Abb. 21: Buchenmulm-Zwergstutzkäfer (Aeletes atomarius) (1 mm) (www.kerbtiere.de)

Thoracophorus corticinus

Dieser kleine und sehr seltene Urwald-Kurzflüglerkäfer lebt unter der verpilzten Rinde von sehr alten Laubbäumen, v.a. Buchen. Auf Grund dieser engen Abhängigkeit an Biotoptradition und das Vorkommen in Wäldern mit altem Baumbestand gilt er als sogenannte Urwald-Reliktart. Es gibt nur wenige Nachweise aus Sachsen, beispielsweise aus dem Moritzburger Wald und dem Röderauwald bei Skassa westlich von Großenhain.

Abb. 22: Urwald-Kurzflügler (Thoracophorus corticinus) (2 mm)

Enicmus planipennis

Die seltene Art lebt v.a. in den Baumkronen alter Kiefern. Es gibt nur wenige Funde aus Sachsen, beispielsweise aus der Oberlausitz (KLAUSNITZER et al. 2009) und bei Torgau (REIKE et al., 2005) sowie im Mittleren Erzgebirge bei Satzung (JÄGER, LORENZ & REIKE 2013)

Abb. 23: Moderkäfer (Enicmus planipennis) (1,5 mm) (Foto: Piezo)

Magdalis caucasicus

Dieser sehr seltene Rüsselkäfer entwickelt sich an Ulme und dürfte durch das Ulmensterben weiterhin an Lebensraum einbüßen.

Abb. 24: Zahnhals-Knospenstecker (Magdalis caucasicus) (0,6 cm)

Corticeus fasciatus

Der Schwarzkäfer Corticeus fasciatus kommt vorwiegend und der losen Rinde abgestorbener Eichen vor. Die Urwald-Reliktart konnte in den vergangenen 10 Jahren an mehreren Fundorten in Sachsen nachgewiesen werden, meist in Waldbeständen und Parks mit Alt-Eichen.

Abb. 25: Rotbindige Linien-Schwarzkäfer (Corticeus fasciatus) (0,5 cm) (Foto: H. Bouyon)

Nachtrag:

Zwei weitere faunistisch interessante Arten, die nach Müller et al. (2005) zu den Urwald-Reliktarten gehören, wurden nach Abschluss der Erfassungen in den letzten beiden Jahren im NSG „Seußlitzer Grund“ gefunden: Ein Vorkommen des Großen Goldkäfers Protatia speciosissima (Scopoli, 1786) (=Protaetia aeruginosa (Linnaeus, 1767)) hat Herr Maik Petzold im oberen Seußlitzgrund nachgewiesen, und Herr Rüdiger Peschel teilte mit, dass er Neomida haemorrhoidalis (Fabricius, 1787) im unteren Seußlitzgrund an einer Buche mit Baumpilzen gefunden hat (vielen Dank den Beiden für die Informationen).

Abb. 19_26: Vom Großen Goldkäfer Protaetia speciosissima gibt es aus Nordsachsen einige wenige Nachweise. Im Elbtal um Meißen und Dresden ist die Art sehr selten.

Abb. 19_27: Der Schwarzkäfer Neomida haemorrholidalis galt bis vor wenigen Jahren als große Seltenheit, kann aber plötzlich an vielen Stellen, v.a. an Rot-Buchen mit Zunderschwamm-Bewuchs gefunden werden.

4. Vorschläge zu Pflege und Entwicklung

Da es sich um ein Natur-Schutz-Gebiet handelt, sollte der Schutz der Natur auch im Vordergrund stehen, was u.a. eine ungestörte Waldentwicklung und damit auch eine weitere Totholz-Anreicherung, v.a. Stehend-Totholz einschließt. Da jedoch ein Weg durchs Gebiet führt, gilt dort die sogenannte Wegesicherungspflicht. Wenn aus Gründen der Verkehrssicherheit Bäume tatsächlich eine Gefahr darstellen, sollten in Wegnähe zumindest standsichere Hochstubben erhalten bleiben und die Bäume nicht wie üblich durch Wurzelhalsschnitt und Stubbenfräsen komplett beseitigt werden. Fremdländische und invasiv sich ausbreitende Baumarten wie Rot-Eiche und Robinie sollten sukzessive entnommen oder durch Ringeln zum Absterben gebracht werden, besonders dort, wo sie heimische Gehölze bedrängen. Andererseits sollten Eichen ebenso gefördert werden wie die Nachpflanzung von Hochstamm-Obstbäumen auf den Streuobstwiesen. In geringem Umfang könnte eine einzelstammweise Entnahme von hochwertigen Stämmen mit Furnierqualität toleriert werden, wenn die Erlöse für Naturschutzmaßnahmen eingesetzt werden und es zur Verbesserung der Schutzsituation im NSG beiträgt.

Aus naturschutzfachlicher und ökologischer Sicht sollte die Wiesenmahd gestaffelt werden, d.h. nie eine Komplettmahd zu einem Zeitpunkt, sondern ein Wechsel von früher und später Mahd, und es müssen immer ca. 20 % der Fläche ungemäht bleiben, jedoch jedes Jahr ein anderer Bereich. Dies setzt allerdings ein Umdenken bei den Behörden voraus, die meist nach „Schema F“ verfahren und naturschutzfachlich unsinnige Förderrichtlinien umsetzen wollen und die örtlichen Bewirtschafter zwingen, fragwürdige Mahdtermine einzuhalten. Entlang des Weges im Talgrund sollte ein Blühsaum erhalten bleiben.

5. Fazit

Der Nachweis von fast 300 xylobionten Käferarten, was etwa ein Drittel des in Sachsen vorkommenden Artenspektrums entspricht, unterstreicht die große Bedeutung des NSG „Seußlitzer Grund“ als Refugium einer überduchschnittlich hohen Zahl schutzwürdiger xylobionter Arten. Rund 100 der nachgewiesenen Arten stehen auf der bundesdeutschen Roten Liste und 36 Arten sind laut BArtSchV gesetzlich geschützt.

Die dreijährige Erfassung wurde auf rein ehrenamtlicher Basis durchgeführt. Der daraus resultierende umfangreiche Bericht ist der Unteren Naturschutzbehörde Meißen zur Verfügung gestellt worden, die lediglich die Ausnahmegenehmigung zur Erfassung der Insekten erteilte. Leider hat sie es weder für nötig erachtet, den Eingang des Berichts zu bestätigen, noch sich dafür zu bedanken oder eine finanzielle Unterstützung zu gewähren.

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Liste der von 2015 bis 2017 im Seußlitzgrund (einschl. Blatterslebener Grund) nachgewiesenen Holz- und Pilzkäferarten mit Angaben zu Gefährdung, Schutzstatus, Häufigkeit und Ökologie

Artenliste_Seusslitzgrund_Lorenz2020.xls

Familie	Art	’15	’16	’17	RLDt	RLSn	BV	H	ÖG	IA	UR	BA	BE
Histeridae	Plegaderus caesus	x	x		.	nb	.	sh	A	.	.	LH	s
Histeridae	Abraeus granulum	x		x	3	nb	.	s	A	.	.	LH	s
Histeridae	Aeletes atomarius		x	x	1	nb	.	ss	xS	!	2	Bu	s
Histeridae	Dendrophilus punctatus	x	x	x	.	nb	.	sh	xS	.	.	Ei	s
Histeridae	Paromalus flavicornis	x	x	x	.	nb	.	sh	A	.	.	LH	s
Histeridae	Paromalus parallelepipedus			x	.	nb	.	h	F	.	.	NH	s
Histeridae	Hololepta plana		x	x	.	nb	.	mh	F	.	.	Pa	s/l
Cholevidae	Nemadus colonoides	x	x		3	nb	.	mh	xS	.	.	LH	s
Cholevidae	Anemadus strigosus	x	x		2	nb	.	s	xS	.	.	Ei	s
Leiodidae	Anisotoma humeralis	x	x		.	nb	.	sh	P	.	.	LH	s/l
Leiodidae	Agathidium nigripenne	x	x	x	.	nb	.	sh	P	.	.	Bu	s/l
Scydmaenidae	Scydmaenus perrisi	x	x		2	nb	.	s	xS	.	.	LH	s
Staphylinidae	Siagonium quadricorne	x			3	nb	.	mh	F	.	.	LH	l
Staphylinidae	Scaphisoma agaricinum	x	x		.	nb	.	sh	P	.	.	LH	l
Staphylinidae	Thoracophorus corticinus	x	x	x	1	nb	.	ss	xS	.	2	Bu	s
Staphylinidae	Phyllodrepa melanocephala	x	x		3	nb	.	s	xS	.	.	LH	s
Staphylinidae	Phyllodrepa nigra	x	x		.	nb	.	ss	xS	.	.	LH	s
Staphylinidae	Dropephylla ioptera	x	x	x	.	nb	.	mh	A	.	.	LH	s/l
Staphylinidae	Xylostiba bosnica		x		.	nb	.	ss	F	.	.	LH	s
Staphylinidae	Hypnogyra angularis	x	x	x	3	nb	.	h	A	.	.	LH	s/l
Staphylinidae	Hesperus rufipennis	x	x	x	2	nb	.	s	A	.	.	Bu	s
Staphylinidae	Quedius dilatatus	x	x	x	3	nb	.	mh	xS	.	.	LH	s
Staphylinidae	Quedius microps			x	3	nb	.	ss	M	.	.	LH	s
Staphylinidae	Quedius brevicornis	x	x		3	nb	.	s	xS	.	.	Ei	s
Staphylinidae	Sepedophilus testaceus	x	x		.	nb	.	sh	A	.	.	L/N	s/l
Staphylinidae	Sepedophilus bipunctatus	x			.	nb	.	h	A	.	.	LH	s/l
Staphylinidae	Oligota granaria	x			.	nb	.	s	A	.	.	Bu	s/l
Staphylinidae	Gyrophaena manca		x		.	nb	.	sh	P	.	.	LH	s
Staphylinidae	Cyphea curtula			x	2	nb	.	mh	F	.	.	LH	s/l
Staphylinidae	Placusa pumilio	x			.	nb	.	s	F	.	.	Ul	s/l
Staphylinidae	Homalota plana	x	x	x	.	nb	.	h	F	.	.	L/N	s/l
Staphylinidae	Anomognathus cuspidatus			x	.	nb	.	h	F	.	.	L/N	s/l
Staphylinidae	Leptusa pulchella			x	.	nb	.	sh	A	.	.	LH	l
Staphylinidae	Euryusa optabilis	x			.	nb	.	s	xS	.	.	LH	l
Staphylinidae	Thamiaraea cinnamomea	x			3	nb	.	s	xS	.	.	Ei	s
Staphylinidae	Phloeopora teres			x	.	nb	.	mh	F	.	.	LH	s/l
Staphylinidae	Phloeopora testacea	x	x		.	nb	.	sh	F	.	.	NH	s
Staphylinidae	Phloeopora corticalis	x	x	x	.	nb	.	sh	F	.	.	LH	s/l
Staphylinidae	Phloeopora scribae		x		.	nb	.	s	F	.	.	LH	s/l
Staphylinidae	Ischnoglossa prolixa	x			.	nb	.	s	F	.	.	L/N	s/l
Staphylinidae	Bibloporus bicolor bicolor	x	x	x	.	nb	.	sh	A	.	.	LH	l
Staphylinidae	Bibloporus minutus		x		.	nb	.	h	A	.	.	LH	s/l
Staphylinidae	? Euplectus kirbii kirbii	x			1	nb	.	s	A	.	.	LH	s/l
Staphylinidae	Euplectus piceus			x	.	nb	.	mh	A	.	.	LH	l
Staphylinidae	Euplectus mutator		x	x	.	nb	.	mh	A	.	.	LH	s/l
Staphylinidae	Plectophloeus fischeri		x		.	nb	.	h	A	.	.	NH	s
Staphylinidae	Batrisus formicarius		x		.	nb	.	mh	xS	.	.	LH	s
Staphylinidae	Batrisodes delaporti		x		.	nb	.	mh	xS	.	.	LH	s/l
Staphylinidae	Batrisodes venustus	x			.	nb	.	s	xS	.	.	LH	s/l
Staphylinidae	Batrisodes unisexualis			x	3	nb	.	s	xS	.	.	LH	s
Cantharidae	Malthinus flaveolus	x	x	x	.	nb	.	sh	A	.	.	LH	s/l
Cantharidae	Malthodes sp.	x			.	.	.	?	A	.	.	LH	s/l
Malachiidae	Malachius bipustulatus	x	x	x	.	nb	.	sh	A	.	.	LH	s/l
Dasytidae	Aplocnemus impressus			x	.	nb	.	h	A	.	.	NH	s/l
Dasytidae	Dasytes plumbeus		x	x	.	nb	.	sh	A	.	.	LH	s/l
Dasytidae	Dasytes aeratus		x	x	.	nb	.	h	A	.	.	LH	s
Cleridae	Tillus elongatus	x	x	x	3	nb	.	h	A	.	.	LH	s
Cleridae	Opilo mollis		x	x	.	nb	.	mh	A	.	.	Bu	s
Cleridae	Thanasimus formicarius			x	.	nb	.	h	F	.	.	NH	s/l
Lymexylidae	Lymexylon navale		x		3	nb	.	mh	A	!	.	Ei	s
Elateridae	Ampedus sanguineus		x	x	.	nb	.	h	A	.	.	L/N	s/l
Elateridae	Ampedus pomorum	x	x	x	.	nb	.	sh	A	.	.	L/N	s/l
Elateridae	Ampedus nigroflavus	x	x	x	3	nb	.	mh	A	.	.	LH	s/l
Elateridae	Ampedus elongatulus	x			3	nb	.	s	A	.	.	LH	l
Elateridae	Brachygonus megerlei	x		x	2	nb	.	s	A	!	.	LH	s
Elateridae	Procraerus tibialis	x	x		2	nb	.	s	M	!	.	LH	s
Elateridae	Melanotus villosus	x		x	.	nb	.	sh	A	.	.	LH	l
Elateridae	Melanotus castanipes		x		.	nb	.	h	A	.	.	Bu	l
Elateridae	Anostirus purpureus			x	.	nb	.	mh	A	.	.	L/N	s/l
Elateridae	Calambus bipustulatus			x	3	nb	.	s	A	.	.	Ei	s
Elateridae	Denticollis linearis	x	x		.	nb	.	h	A	.	.	L/N	l
Eucnemidae	Melasis buprestoides	x	x	x	.	nb	.	h	F	.	.	LH	s/l
Eucnemidae	Isorhipis melasoides			x	2	nb	.	ss	F	.	.	LH	s/l
Eucnemidae	Eucnemis capucina	x	x	x	3	nb	.	h	A	.	.	LH	s
Eucnemidae	Dromaeolus barnabita	x		x	2	nb	.	s	A	!	.	LH	s
Eucnemidae	Microrhagus lepidus			x	3	nb	.	ss	A	.	.	LH	s
Eucnemidae	Hylis olexai	x	x	x	3	nb	.	mh	A	.	.	L/N	s
Eucnemidae	Hylis cariniceps		x		3	nb	.	s	A	.	.	L/N	s
Buprestidae	Anthaxia nitidula		x	x	.	nb	§	h	F	.	.	LH	s
Buprestidae	Anthaxia helvetica			x	.	nb	§	mh	F	.	.	Fi	s/l
Buprestidae	Agrilus ater			x	2	nb	§	ss	F	!	.	Pa	s
Buprestidae	Agrilus biguttatus	x			.	nb	.	mh	F	.	.	Ei	s
Buprestidae	Agrilus laticornis	x			.	nb	§	h	F	.	.	Ei	s
Buprestidae	Agrilus angustulus	x			.	nb	§	h	F	.	.	LH	s
Buprestidae	Agrilus sulcicollis	x	x	x	.	nb	§	h	F	.	.	Ei	s
Scirtidae	Prionocyphon serricornis	x	x		3	2	.	mh	xS	.	.	LH	s
Dermestidae	Attagenus punctatus			x	2	nb	.	mh	xS	!	.	Bu	s
Dermestidae	Trinodes hirtus	x			3	nb	.	mh	xS	.	.	Ei	s
Bothrideridae	Bothrideres bipunctatus			x	1	nb	.	s	A	!	.	LH	s
Cerylonidae	Cerylon histeroides	x	x	x	.	nb	.	sh	A	.	.	LH	s/l
Cerylonidae	Cerylon ferrugineum	x	x	x	.	nb	.	sh	A	.	.	LH	s/l
Nitidulidae	Epuraea pallescens			x	.	nb	.	mh	F	.	.	LH	l
Nitidulidae	Epuraea longula	x			.	nb	.	mh	F	.	.	LH	s
Nitidulidae	Epuraea distincta			x	3	nb	.	mh	P	.	.	LH	s/l
Nitidulidae	Epuraea variegata	x	x		.	nb	.	sh	P	.	.	LH	s/l
Nitidulidae	Glischrochilus quadriguttatus	x	x		.	nb	.	mh	F	.	.	L/N	s/l
Monotomidae	Rhizophagus dispar	x	x		.	nb	.	sh	F	.	.	L/N	s/l
Monotomidae	Rhizophagus bipustulatus	x	x	x	.	nb	.	sh	F	.	.	L/N	s/l
Monotomidae	Rhizophagus fenestralis			x	.	nb	.	mh	F	.	.	LH	l
Silvanidae	Silvanus bidentatus			x	.	nb	.	h	F	.	.	L/N	s/l
Silvanidae	Silvanus unidentatus	x		x	.	nb	.	h	A	.	.	LH	s/l
Silvanidae	Uleiota planatus	x		x	.	nb	.	sh	A	.	.	L/N	s/l
Erotylidae	Tritoma bipustulata	x	x	x	.	nb	.	sh	P	.	.	LH	s/l
Erotylidae	Dacne bipustulata	x	x	x	.	nb	.	sh	P	.	.	LH	s/l
Biphyllidae	Diplocoelus fagi	x		x	.	nb	.	h	P	.	.	LH	s/l
Cryptophagidae	Cryptophagus micaceus	x	x	x	2	nb	.	h	xS	.	.	LH	s
Cryptophagidae	Cryptophagus labilis	x	x	x	2	nb	.	mh	M	.	.	LH	s
Cryptophagidae	Atomaria turgida			x	.	nb	.	h	A	.	.	Fi	l
Cryptophagidae	Atomaria pulchra			x	.	nb	.	mh	P	.	.	L/N	l
Laemophloeidae	Laemophloeus monilis			x	3	nb	.	s	F	.	.	Bu	s/l
Laemophloeidae	Placonotus testaceus			x	.	nb	.	s	F	.	.	LH	l
Laemophloeidae	Cryptolestes duplicatus	x	x		.	nb	.	mh	F	.	.	Ei	s/l
Laemophloeidae	Leptophloeus alternans			x	.	nb	.	h	F	.	.	NH	l
Laemophloeidae	Lathropus sepicola			x	2	nb	.	s	F	.	.	LH	s
Latridiidae	Latridius hirtus	x	x	x	3	nb	.	mh	P	.	.	Ei	s
Latridiidae	Enicmus brevicornis	x	x	x	3	nb	.	s	P	.	.	LH	s/l
Latridiidae	Enicmus fungicola		x	x	.	nb	.	h	P	.	.	LH	l
Latridiidae	Enicmus planipennis			x	1	nb	.	ss	P	.	.	NH	l
Latridiidae	Enicmus atriceps	x	x		2	nb	.	ss	P	.	.	LH	s/l
Latridiidae	Corticaria alleni		x		2	nb	.	ss	A	.	.	Hbu	s
Latridiidae	Corticarina parvula		x		2	nb	.	h	P	.	.	NH	s/l
Mycetophagidae	Litargus connexus	x		x	.	nb	.	sh	P	.	.	LH	s/l
Mycetophagidae	Mycetophagus quadripustulatus	x	x	x	.	nb	.	h	P	.	.	LH	s/l
Mycetophagidae	Mycetophagus piceus	x	x		3	nb	.	h	P	.	.	LH	s/l
Mycetophagidae	Mycetophagus salicis		x		2	nb	.	mh	P	.	.	LH	s/l
Mycetophagidae	Mycetophagus atomarius	x			.	nb	.	h	P	.	.	LH	s/l
Mycetophagidae	Mycetophagus quadriguttatus	x	x		.	nb	.	mh	P	.	.	Ei	s
Mycetophagidae	Mycetophagus fulvicollis	x	x	x	2	nb	.	mh	P	!	.	LH	s
Mycetophagidae	Mycetophagus populi	x	x	x	2	nb	.	s	P	!	.	LH	s
Colydiidae	Pycnomerus terebrans	x	x	x	1	nb	.	mh	A	!	.	LH	s
Colydiidae	Synchita mediolanensis			x	1	nb	.	E17	A	.	.	LH	s
Colydiidae	Synchita undata	x		x	3	nb	.	mh	P	!	.	LH	s/l
Colydiidae	Bitoma crenata			x	.	nb	.	sh	A	.	.	LH	s/l
Colydiidae	Colydium elongatum	x			3	nb	.	s	F	!	.	L/N	s
Corylophidae	Arthrolips obscura	x			2	nb	.	s	A	.	.	LH	s
Corylophidae	Arthrolips nana	x		x	2	nb	.	ss	P	.	.	LH	s
Corylophidae	Orthoperus atomus			x	.	nb	.	s	P	.	.	LH	s/l
Corylophidae	Orthoperus corticalis	x			.	nb	.	s	P	.	.	LH	l
Endomychidae	Symbiotes latus	x			2	nb	.	ss	M	!	.	LH	s/l
Endomychidae	Symbiotes gibberosus		x	x	2	nb	.	s	M	!	.	Bu	s
Sphindidae	Sphindus dubius			x	.	nb	.	s	P	.	.	LH	s/l
Ciidae	Rhopalodontus perforatus			x	3	nb	.	h	P	.	.	LH	s/l
Ciidae	Sulcacis nitidus		x	x	.	nb	.	sh	P	.	.	Bu	s/l
Ciidae	Sulcacis bidentulus			x	2	nb	.	ss	P	.	.	LH	s/l
Ciidae	Cis castaneus			x	.	nb	.	sh	P	.	.	L/N	s/l
Ciidae	Cis micans	x	x	x	.	nb	.	sh	P	.	.	LH	s/l
Ciidae	Cis boleti			x	.	nb	.	sh	P	.	.	L/N	s/l
Ciidae	Cis rugulosus	x			.	nb	.	mh	P	.	.	LH	s/l
Ciidae	Cis fagi	x	x		.	nb	.	h	P	.	.	LH	s/l
Ciidae	Cis fusciclavis		x	x	.	nb	.	mh	P	.	.	LH	s/l
Ciidae	Orthocis alni	x			.	nb	.	h	P	.	.	LH	s/l
Ciidae	Cis vestitus	x			2	nb	.	mh	P	.	.	LH	s/l
Ciidae	Ennearthron cornutum	x			.	nb	.	sh	P	.	.	LH	s/l
Bostrichidae	Lyctus cavicollis	x			.	nb	.	ss	A	.	.	ei	s
Bostrichidae	Xylopertha retusa			x	3	nb	.	ss	F	!	.	Ei	l
Anobiidae	Ptinomorphus imperialis	x		x	.	nb	.	h	A	.	.	LH	s/l
Anobiidae	Dryophilus pusillus	x	x		.	nb	.	mh	F	.	.	NH	s/l
Anobiidae	Xestobium rufovillosum	x	x	x	.	nb	.	h	A	.	.	LH	s/l
Anobiidae	Hyperisus plumbeum	x	x		.	nb	.	h	A	.	.	LH	s
Anobiidae	Ernobius mollis			x	.	nb	.	h	A	.	.	NH	s
Anobiidae	Oligomerus brunneus	x	x	x	3	nb	.	mh	A	.	.	LH	s/l
Anobiidae	Hemicoelus canaliculatus		x		.	nb	.	mh	A	.	.	LH	s
Anobiidae	Priobium carpini			x	.	nb	.	s	A	.	.	Ei	s
Anobiidae	Ptilinus pectinicornis	x	x	x	.	nb	.	sh	A	.	.	LH	s
Anobiidae	Ptilinus fuscus			x	.	nb	.	s	A	.	.	LH	s
Anobiidae	Xyletinus ater		x		.	nb	.	ss	A	.	.	Ei	s
Anobiidae	Xyletinus fibyensis			x	2	nb	.	ss	A	.	.	Ei	s
Anobiidae	Xyletinus vaederoeensis		x	x	2	nb	.	ss	A	.	.	Zit	s
Anobiidae	Dorcatoma flavicornis		x		3	nb	.	s	A	!	.	LH	s
Anobiidae	Dorcatoma chrysomelina	x	x	x	3	nb	.	h	A	!	.	Ei	s
Anobiidae	Dorcatoma substriata			x	2	nb	.	ss	P	!	.	LH	s
Anobiidae	Dorcatoma minor		x	x	nb	nb	.	ss	P	.	.	LH	s
Anobiidae	Dorcatoma androgyna			x	nb	nb	.	E17	P	.	.	LH	s
Anobiidae	Dorcatoma dresdensis		x		3	nb	.	h	P	.	.	LH	s
Anobiidae	Dorcatoma robusta	x		x	2	nb	.	mh	P	!	.	LH	s
Ptinidae	Ptinus rufipes		x		.	nb	.	h	A	.	.	LH	s/l
Ptinidae	Ptinus sexpunctatus	x			3	nb	.	s	xS	.	.	LH	s
Oedemeridae	Ischnomera cyanea		x		.	nb	.	s	A	.	.	LH	s/l
Salpingidae	Lissodema cursor			x	.	nb	.	mh	F	.	.	LH	l
Salpingidae	Rabocerus gabrieli			x	2	nb	.	s	F	!	.	LH	s
Salpingidae	Salpingus planirostris		x	x	.	nb	.	sh	F	.	.	L/N	s/l
Salpingidae	Salpingus ruficollis		x	x	.	nb	.	h	F	.	.	LH	s/l
Pyrochroidae	Pyrochroa coccinea			x	.	nb	.	sh	A	.	.	LH	s/l
Pyrochroidae	Schizotus pectinicornis		x	x	.	nb	.	h	A	.	.	LH	s/l
Scraptiidae	Scraptia fuscula	x	x	x	3	nb	.	mh	A	.	.	Ei	s
Scraptiidae	Anaspis frontalis	x	x	x	.	nb	.	sh	A	.	.	LH	s/l
Scraptiidae	Anaspis maculata			x	.	nb	.	ss	A	.	.	LH	s/l
Scraptiidae	Anaspis thoracica		x		.	nb	.	sh	A	.	.	LH	s/l
Scraptiidae	Anaspis rufilabris	x		x	.	nb	.	sh	A	.	.	LH	s/l
Scraptiidae	Anaspis flava	x	x	x	.	nb	.	sh	A	.	.	LH	s
Aderidae	Aderus populneus	x		x	3	nb	.	s	M	.	.	Ei	s
Aderidae	Euglenes oculatus		x		2	nb	.	s	M	!	.	L/N	s
Mordellidae	Tomoxia bucephala	x	x	x	.	nb	.	h	A	.	.	Bu	s
Mordellidae	Mordella brachyura			x	.	nb	.	sh	A	.	.	LH	s/l
Mordellidae	Mordellistena neuwaldeggiana		x		.	nb	.	h	A	.	.	LH	s/l
Mordellidae	Mordellistena variegata		x		.	nb	.	h	A	.	.	LH	s/l
Melandryidae	Orchesia micans			x	.	nb	.	mh	P	.	.	LH	l
Melandryidae	Orchesia fasciata	x			3	nb	.	ss	P	.	.	LN	l
Melandryidae	Orchesia undulata		x	x	.	nb	.	mh	P	.	.	LH	s/l
Melandryidae	Anisoxya fuscula		x		3	nb	.	s	P	.	.	LH	s/l
Melandryidae	Serropalpus barbatus			x	.	nb	.	s	A	.	.	NH	s/l
Melandryidae	Melandrya caraboides		x		3	nb	.	s	A	.	.	LH	s/l
Melandryidae	Conopalpus testaceus	x	x	x	.	nb	.	mh	A	.	.	LH	l
Tetratomidae	Tetratoma fungorum		x	x	.	nb	.	mh	P	.	.	LH	s
Alleculidae	Allecula morio	x	x	x	3	nb	.	mh	M	.	.	Ei	s
Alleculidae	Prionychus ater	x		x	3	nb	.	mh	M	.	.	LH	s
Alleculidae	Pseudocistela ceramboides		x	x	2	nb	.	s	M	.	.	Ei	s/l
Alleculidae	Mycetochara maura	x	x	x	.	nb	.	h	A	.	.	LH	s
Tenebrionidae	Bolitophagus reticulatus	x		x	3	nb	.	h	P	.	.	Bu	s/l
Tenebrionidae	Eledona agricola	x			.	nb	.	mh	P	.	.	LH	s/l
Tenebrionidae	Diaperis boleti		x		.	nb	.	h	P	.	.	LH	s/l
Tenebrionidae	Platydema violaceum			x	3	nb	.	s	P	.	.	LH	s
Tenebrionidae	Pentaphyllus testaceus	x			3	nb	.	mh	A	.	.	LH	s
Tenebrionidae	Corticeus unicolor	x	x		.	nb	.	sh	A	.	.	LH	s/l
Tenebrionidae	Corticeus bicolor	x	x	x	3	nb	.	mh	F	.	.	L/N	s
Tenebrionidae	Corticeus fasciatus		x		2	nb	.	s	A	!	2	Ei	s
Tenebrionidae	Uloma culinaris	x	x	x	2	nb	.	mh	A	!	.	L/N	s/l
Tenebrionidae	Neatus picipes	x			1	nb	.	mh	A	!	1	LH	s
Tenebrionidae	Stenomax aeneus	x		x	.	nb	.	h	A	.	.	L/N	s/l
Scarabaeidae	Cetonia aurata aurata	x		x	.	.	§	h	A	.	.	LH	s/l
Scarabaeidae	Protaetia fieberi	x			2	1	§	ss	M	!	.	Apf	s
Scarabaeidae	Protaetia marmorata	x	x		2	3	§	mh	M	!	.	Bu	s
Scarabaeidae	Osmoderma eremita	x		x	2	2	§	mh	M	!	2	LH	s
Scarabaeidae	Gnorimus nobilis	x	x	x	3	2	§	s	M	!	.	LH	s/l
Lucanidae	Platycerus caraboides	x		x	.	3	§	s	A	.	.	LH	s
Lucanidae	Sinodendron cylindricum	x	x		3	4	§	h	A	.	.	LH	s/l
Cerambycidae	Spondylis buprestoides			x	.	.	§	mh	A	.	.	NH	s/l
Cerambycidae	Arhopalus rusticus			x	.	.	§	mh	A	.	.	NH	s
Cerambycidae	Grammoptera ustulata	x	x		.	2	§	ss	A	.	.	LH	s/l
Cerambycidae	Grammoptera ruficornis			x	.	.	§	sh	A	.	.	LH	s/l
Cerambycidae	Grammoptera abdominalis		x		.	4	§	s	A	.	.	Ei	s
Cerambycidae	Rutpela maculata	x			.	.	§	sh	A	.	.	LH	s/l
Cerambycidae	Pedostrangalia revestita			x	2	3	§	ss	A	.	.	LH	s/l
Cerambycidae	Cerambyx scopolii	x			3	2	§	s	F	.	.	LH	s/l
Cerambycidae	Axinopalpis gracilis	x			1	1	§	s	F	.	.	Ei	s/l
Cerambycidae	Obrium cantharinum		x	x	2	1	§	ss	F	.	.	LH	s
Cerambycidae	Ropalopus femoratus		x		3	1	§	ss	F	.	.	LH	s
Cerambycidae	Phymatodes testaceus	x			.	.	§	h	F	.	.	LH	l
Cerambycidae	Poecilium alni	x			.	2	§	s	F	.	.	Ei	s/l
Cerambycidae	Xylotrechus rusticus		x		2	1	§	s	F	.	.	LH	s/l
Cerambycidae	Xylotrechus antilope	x			.	1	§	s	F	.	.	LH	s/l
Cerambycidae	Plagionotus detritus	x			2	3	§	s	F	!	.	Ei	s
Cerambycidae	Plagionotus arcuatus	x			.	.	§	s	F	.	.	LH	s/l
Cerambycidae	Anaglyptus mysticus		x		.	.	§	mh	F	.	.	LH	s/l
Cerambycidae	Leiopus nebulosus	x		x	.	.	§	sh	F	.	.	LH	s/l
Cerambycidae	Exocentrus adspersus	x			3	1	§	s	F	.	.	Ei	s
Cerambycidae	Exocentrus lusitanus			x	3	3	§	s	F	.	.	Li	s/l
Cerambycidae	Saperda perforata			x	2	2	§	ss	F	!	.	Pa	s
Cerambycidae	Tetrops praeustus			x	.	.	§	h	F	.	.	LH	s/l
Anthribidae	Tropideres albirostris	x		x	3	nb	.	s	A	.	.	LH	s
Anthribidae	Pseudeuparius sepicola			x	.	nb	.	s	A	.	.	LH	s/l
Anthribidae	Platystomos albinus		x		.	nb	.	mh	A	.	.	LH	s/l
Curculionidae	Scolytus rugulosus		x	x	.	nb	.	mh	F	.	.	LH	s
Curculionidae	Scolytus intricatus	x	x		.	nb	.	sh	F	.	.	LH	s/l
Curculionidae	Scolytus mali			x	.	nb	.	mh	F	.	.	LH	s
Curculionidae	Scolytus carpini			x	.	nb	.	mh	F	.	.	LH	l
Curculionidae	Scolytus multistriatus		x	x	.	nb	.	h	F	.	.	Ul	s
Curculionidae	Phloeotribus spinulosus			x	.	nb	.	mh	F	.	.	NH	l
Curculionidae	Hylastes ater			x	.	nb	.	mh	F	.	.	Ki	l
Curculionidae	Hylastes opacus			x	.	nb	.	mh	F	.	.	Ki	s/l
Curculionidae	Hylurgops palliatus			x	.	nb	.	h	F	.	.	NH	l
Curculionidae	Polygraphus grandiclava	x			.	nb	.	s	F	.	.	LH	s
Curculionidae	Hylesinus crenatus		x		.	nb	.	s	F	.	.	Es	s
Curculionidae	Hylesinus toranio			x	.	nb	.	s	F	.	.	Es	s
Curculionidae	Hylesinus varius	x	x	x	.	nb	.	sh	F	.	.	Es	s/l
Curculionidae	Dryocoetes villosus villosus		x		.	nb	.	mh	F	.	.	Ei	s
Curculionidae	Trypophloeus binodulus		x	x	3	nb	.	ss	F	.	.	Pap	s
Curculionidae	Ernoporicus fagi	x	x		.	nb	.	h	F	.	.	LH	s/l
Curculionidae	Ernoporus tiliae		x	x	.	nb	.	h	F	.	.	LH	s/l
Curculionidae	Pityophthorus pubescens			x	.	nb	.	s	F	.	.	Ki	s
Curculionidae	Pityophthorus lichtensteini			x	.	nb	.	s	F	.	.	NH	s/l
Curculionidae	Pityophthorus glabratus			x	.	nb	.	mh	F	.	.	Ki	s
Curculionidae	Taphrorychus bicolor	x	x	x	.	nb	.	h	F	.	.	LH	s/l
Curculionidae	Pityogenes chalcographus			x	.	nb	.	sh	F	.	.	NH	s/l
Curculionidae	Xyleborinus saxesenii	x	x	x	.	nb	.	sh	F	.	.	L/N	s/l
Curculionidae	Xyleborus monographus	x	x	x	.	nb	.	h	F	.	.	LH	s
Curculionidae	Xyleborus dryographus		x		.	nb	.	ss	F	.	.	LH	s/l
Curculionidae	Cyclorhipidion bodoanus	x			.	nb	.	ss	F	.	.	LH	s/l
Curculionidae	Trypodendron domesticus		x	x	.	nb	.	h	F	.	.	LH	s/l
Curculionidae	Trypodendron lineatus		x		.	nb	.	h	F	.	.	LH	s/l
Curculionidae	Platypus cylindrus			x	3	nb	.	ss	F	.	.	LH	s/l
Curculionidae	Rhyncolus punctatulus		x	x	2	nb	.	s	A	.	.	Roß	s
Curculionidae	Phloeophagus lignarius			x	.	nb	.	s	A	.	.	LH	s/l
Curculionidae	Stereocorynes truncorum	x	x	x	.	nb	.	h	A	.	.	LH	s/l
Curculionidae	Magdalis ruficornis			x	.	nb	.	h	F	.	.	LH	s
Curculionidae	Magdalis flavicornis	x			.	nb	.	mh	F	.	.	Ei	s
Curculionidae	Magdalis cerasi	x			.	nb	.	h	F	.	.	LH	s
Curculionidae	Magdalis armigera			x	.	nb	.	mh	F	.	.	Ul	s
Curculionidae	Magdalis caucasica			x	1	nb	.	ss	F	.	.	Ul	s
Curculionidae	Magdalis phlegmatica			x	.	nb	.	mh	F	.	.	Ki	s
Curculionidae	Hylobius abietis			x	.	nb	.	h	F	.	.	NH	s/l
Curculionidae	Echinodera hypocrita			x	.	nb	.	mh	A	.	.	LH	s/l

RLDt: Rote Listen von Deutschland (GEISER 1998) Gefährdungskategorien: 0 = Ausgestorben/Ausgerottet/Verschollen; 1 = vom Aussterben bedroht; 2 = stark gefährdet; 3 = gefährdet; . = derzeit keine Gefährdung erkennbar; RLSn: Rote Listen von Sachsen (GEBERT 2009: Laufkäfer; KLAUSNITZER 1994: Bockkäfer und KLAUSNITZER 1995: Blatthornkäfer und Hirschkäfer): nb = nicht bearbeitet; . = derzeit keine Gefährdung erkennbar) BV: Bundesartenschutzverordnung H = Häufigkeit: ss = sehr selten; s = selten; mh = mäßig häufig; h = häufig; sh = sehr häufig; (subjektive Einschätzung des Autors bezogen nur auf Sachsen und auf 30jährige empirische Erfahrungen auf Grundlage vieler Gutachten und Untersuchungen sowie einer 100.000 Datensätze umfassenden Datenbank mit mehr als 3.200 Käferarten von mehr als 1.700 Fundorten in Sachsen); ÖG = Ökologische Gilde (nach SCHMIDL & BUSSLER 2003) = Substratgilden: F = Frischholzbesiedler, A = Altholzbesieder, P = an Pilzen, die auf Holz wachsen und M = Mulmhöhlenbesiedler; xS = Arten mit xylobionten Sonderbiologien, z.B. Baumsaftfresser, Kommensalen in Nestern anderer Holzinsekten) s = sonstige Arten mit Relevanz für morsches Lindenholz; IA = Indikatorarten bzw. waldökologisch besonders relevante Arten (v.a. unter Berücksichtigung historischer Aspekte wie Faunentradition, die auf Bestandeskontinuität fußt) (nach SCHMIDL & BUSSLER 2003); UR = Urwald-Reliktart nach MÜLLER et al. (2005): Kategorie 1 (Urwaldrelikte im engeren Sinne) und Kategorie 2 (Urwaldrelikt-Arten im weiteren Sinne) mit zusätzlichen Anforderungen an Requisiten, Ressourcen und Strukturen, wie z.B. große Waldflächen, seltene Holzpilze, starke Totholzdimensionen, hohes Baumalter, Heliophilie der Bestände, lange Verweildauer bzw. späte Sukzessionsstadien der Holzstruktur im Abbauprozess); BA= Baumart: Apf = Apfel; Bu = Buche; Ei = Eiche; Es = Esche; Fi = Fichte; Hbu = Hainbuche; Ki = Kiefer; LH = Laubholz; L/N = Laub- und Nadelholz; NH = Nadelholz; Li = Linde; Pa = Pappel; Roß = Rosskastanie; Ul = Ulme; Zi = Zitterpappel; BE= Exposition der Totholzstruktur: s = an Stehend-Totholz; l = an Liegend-Totholz; s/l = keine Bevorzugung der Exposition;